摘要
小膠質(zhì)細胞的激活在視網(wǎng)膜新生血管性疾病的發(fā)生發(fā)展中起著關(guān)鍵作用。因此,有必要揭示其病理生理和分子機制,以干預(yù)疾病的進展。在這里,使用公開可用的單細胞RNA測序數(shù)據(jù)集來鑒定在視網(wǎng)膜血管生成模型中通過外泌體從M1小膠質(zhì)細胞向M0小膠質(zhì)細胞的細胞間通信增加。此外,在體外和體內(nèi)的結(jié)果表明,M1小膠質(zhì)細胞衍生的外泌體促進活化和增強靜息小膠質(zhì)細胞的促血管生成能力?;谕饷隗w的miRNA測序結(jié)合基因干擾,進一步的結(jié)果表明,活化的小膠質(zhì)細胞衍生的外泌體通過miR-155-5p向M0小膠質(zhì)細胞傳遞極化信號來促進小膠質(zhì)細胞活化。隨后,miR-155-5p抑制Socs1并激活NFκB通路,最終導(dǎo)致炎癥級聯(lián)反應(yīng)并放大促血管生成作用。此外,上調(diào)的Irf1驅(qū)動miR-155-5p在活化的小膠質(zhì)細胞中的表達,從而導(dǎo)致miR-155-5p被外泌體包裹的趨勢增加。因此,本研究闡明不同類型的小膠質(zhì)細胞之間的細胞間通訊在復(fù)雜的視網(wǎng)膜微環(huán)境中血管生成過程中的關(guān)鍵作用,并有助于臨床視網(wǎng)膜新生血管的新的,有針對性的和潛在的治療策略。本文于2023年5月發(fā)表在《International journal of biological sciences》IF: 9.2期刊上。
技術(shù)路線
主要實驗結(jié)果
1、通過生物信息學(xué)分析,OIR模型中的外泌體增加從M1小膠質(zhì)細胞到M0小膠質(zhì)細胞的細胞間通訊
OIR模型允許直接詢問視網(wǎng)膜的血管生成反應(yīng)。為更好地了解小膠質(zhì)細胞對視網(wǎng)膜血管生成的潛在貢獻,作者分析從對照視網(wǎng)膜中提取的單細胞的轉(zhuǎn)錄組和出生后第17天的OIR小鼠,基于公開的單細胞RNA測序數(shù)據(jù)集(accession no. GSE152928)。在質(zhì)量控制過濾器后,分別從對照和OIR小鼠獲得9045和6140個視網(wǎng)膜細胞。然后對細胞譜進行無偏聚類,根據(jù)多個公認的標記,發(fā)現(xiàn)小膠質(zhì)細胞/巨噬細胞相關(guān)基因主要分布在八個簇中,并且一個細胞簇表現(xiàn)出內(nèi)皮細胞(ECs)的特征。使用已知的小膠質(zhì)細胞亞型特異性標志物,進一步將小膠質(zhì)細胞/巨噬細胞相關(guān)簇分為兩大類,包括M0小膠質(zhì)細胞簇和M1小膠質(zhì)細胞簇(圖1A-B)。Il1β和Tnfα是促炎M1極化的兩個特征基因,在OIR視網(wǎng)膜的M1小膠質(zhì)細胞簇中明顯增加(圖1C),表明M1小膠質(zhì)細胞簇在病理過程中具有更高水平的極化和更活躍的狀態(tài)。為進一步解釋活性M1小膠質(zhì)細胞對各種細胞的影響,作者將受體配體對映射到細胞類型上,以構(gòu)建假定的細胞通訊。觀察到與對照組小鼠相比,OIR小鼠的視網(wǎng)膜細胞間質(zhì)細胞通訊網(wǎng)絡(luò)中的M1小膠質(zhì)細胞活性增強(圖1D-E)。具體來說,從M1小膠質(zhì)細胞到血管EC的細胞間通訊或M0小膠質(zhì)細胞增加。由于許多研究已報道活化小膠質(zhì)細胞與EC在血管生成中的關(guān)聯(lián),因此作者重點關(guān)注M1極化小膠質(zhì)細胞與處于靜息穩(wěn)態(tài)的小膠質(zhì)細胞之間的關(guān)系。然而,活化和靜息小膠質(zhì)細胞之間的通訊機制尚不清楚。
既往研究表明,外泌體是細胞通訊的重要介質(zhì),外泌體內(nèi)化可由配-受體介導(dǎo)的內(nèi)吞作用介導(dǎo)。因此,來源于M1小膠質(zhì)細胞的外泌體對于OIR中靜息小膠質(zhì)細胞至關(guān)重要。與預(yù)期一致,OIR視網(wǎng)膜的M63小膠質(zhì)細胞簇中的特異性外泌體標志物Cd63和Sdcbp顯著增加(圖1F-G)。因此,這些發(fā)現(xiàn)表明,在OIR誘導(dǎo)的血管生成中,從M1小膠質(zhì)細胞到M0小膠質(zhì)細胞的細胞間通訊增加,M1小膠質(zhì)細胞衍生的外泌體可能介導(dǎo)上述過程。
圖1 單細胞RNA-seq發(fā)現(xiàn),在視網(wǎng)膜血管生成模型中從M1小膠質(zhì)細胞到M0小膠質(zhì)細胞的細胞間通訊增加
2、M1小膠質(zhì)外泌體促進體外小膠質(zhì)細胞M1極化
為闡明M1極化小膠質(zhì)細胞衍生外泌體的作用,作者利用BV2細胞(一種小鼠小膠質(zhì)細胞)進行進一步實驗。BV2細胞通過添加1ng/ml LPS極化為M100表型,這是激活小膠質(zhì)細胞的典型方法。如圖2A所示,LPS處理促進細胞轉(zhuǎn)變?yōu)榫哂性S多假足的不規(guī)則形式。與添加PBS相比,對照組中活化小膠質(zhì)細胞的比例增加(圖2B)。此外,活化小膠質(zhì)細胞標志物的表達均顯著增加,包括用于小膠質(zhì)細胞活化的CD68,以及用于M1表型的iNOS和Il1β(圖2C-E)。此外,基于使用流式細胞術(shù)對CD11b和CD86陽性(M1表型小膠質(zhì)細胞表達的另一個標志物)細胞的分析,作者發(fā)現(xiàn)LPS顯著誘導(dǎo)BV2小膠質(zhì)細胞極化為M1表型(圖2F-G)。
為更好地了解來源于M0型和M1型BV2細胞的外泌體的功能,首先通過超速離心分離外泌體進行鑒定。在透射電子顯微鏡(TEM)下觀察到典型的杯形膜囊泡形態(tài)(圖2H)。納米顆粒示蹤分析(NTA)表明,M0和M1 BV2細胞外泌體的粒徑分布主要在30-150 nm范圍內(nèi)(圖2I)。蛋白質(zhì)印跡圖顯示,已知的外泌體特征標志物(包括Cd63和Tsg101)在外泌體中含量很高。此外,細胞裂解物富含鈣連接蛋白(一種內(nèi)質(zhì)網(wǎng)蛋白),而在外泌體中未檢測到鈣連接蛋白,這表明分離的外泌體相對純凈,沒有污染其他細胞區(qū)室(圖2J)。
圖2 源自靜息和LPS激活的M1小膠質(zhì)細胞的外泌體的表征
接下來,作者專注于外泌體對原代視網(wǎng)膜小膠質(zhì)細胞(PMG)的影響。培養(yǎng)的PMG與PKH26標記的外泌體(紅色)一起孵育,這些外泌體是從BV2衍生的條件培養(yǎng)基中收集的。在處理后24小時,用Iba1+(一種特定的小膠質(zhì)細胞標志物)對細胞進行染色。數(shù)據(jù)顯示M0-EXO和M1-EXO(紅色)都位于Iba1陽性PMG(綠色)的細胞質(zhì)中,表明外泌體被PMG吞噬(圖3A)。此外,在PMG中用M1-EXO處理24小時誘導(dǎo)細胞形態(tài)變化(白色箭頭)(圖3B)。與PBS組和M0-EXO處理組相比,M1-EXO處理組觀察到更多的變形蟲和不規(guī)則形狀的Iba1陽性細胞(圖3C)。為表征活化小膠質(zhì)細胞的極化表型,作者通過蛋白質(zhì)印跡進一步測量M1激活的標記物iNOS和Il1β的表達水平。結(jié)果表明,與PBS組和M0-EXO處理組相比,M1-EXO組iNOS和Il1β表達顯著增加(圖3D-E)。此外,如圖3F-G所示,流式細胞術(shù)的結(jié)果進一步證實,M1-EXO處理M1小膠質(zhì)細胞的百分比顯著增加。綜上所述,結(jié)果表明在體外M1外泌體治療后,PMGs向M1促炎狀態(tài)極化。
圖3 M1小膠質(zhì)細胞外泌體在體外促進原發(fā)性視網(wǎng)膜小膠質(zhì)細胞的M1極化
3、M1小膠質(zhì)細胞通過體外外泌體增強M0小膠質(zhì)細胞的促血管生成潛力
為評估用小膠質(zhì)細胞外泌體處理后PMG的促血管生成能力,用下述條件培養(yǎng)基處理HUVEC。例如,用M0-EXO,M1-EXO和PBS作為對照處理PMG。然后,收集條件培養(yǎng)基作為PBS處理的PMG條件培養(yǎng)基(pPMG-CM),靜息外泌體處理的PMG條件培養(yǎng)基(rPMG-CM)和活化的外泌體處理的PMG條件培養(yǎng)基(aPMG-CM)。如圖4A所示,與用pPMG-CM或rPMG-CM處理的細胞相比,aPMG-CM顯著促進HUVEC的增殖。同樣,與pPMG-CM或rPMG-CM處理相比,aPMG-CM處理增加毛細管樣管和液絡(luò)部的數(shù)量。定量后,rPMG-CM顯著加強血管的形成(圖4B)。CM對HUVECs遷移的影響通過遷移傷口愈合測定法進行評估。結(jié)果顯示,在用aPMG-CM治療后24小時和48小時,在光學(xué)顯微鏡下觀察到明顯較小的剩余傷口面積(圖4C-D)。此外,在治療后24小時從HUVEC中提取整個蛋白質(zhì),以評估血管生成相關(guān)蛋白的表達。ELISA顯示,與pPMG-CM或rPMG-CM組相比,aPMG-CM組的Sdf1表達顯著增加(圖4E)。此外,如圖4F-G所示,蛋白質(zhì)印跡測定表明,用aPMG-CM處理的HUVECs中Cxcr4、Hif1α和Vegf均顯著升高。
總的來說,這些數(shù)據(jù)表明M1-EXO處理的小膠質(zhì)細胞在體外促進血管生成;換句話說,M1小膠質(zhì)細胞外泌體激活M0小膠質(zhì)細胞,隨后放大其促血管生成活性,這表明血管生成與源自活化小膠質(zhì)細胞的外泌體之間存在間接聯(lián)系。
圖4 來源于M1小膠質(zhì)細胞的外泌體在體外提高小膠質(zhì)細胞的促血管生成能力
4、M1小膠質(zhì)細胞外泌體促進體內(nèi)M1視網(wǎng)膜小膠質(zhì)細胞的極化
為在體外確認結(jié)果,作者使用成年小鼠模型檢查玻璃體內(nèi)注射M0-EXO或M1-EXO后視網(wǎng)膜的變化,使用PBS和假組的陰性對照(圖5A)。如圖5B所示,玻璃體內(nèi)注射兩天后,通過小鼠視網(wǎng)膜中的3D共聚焦圖像檢測到PKH26標記的外泌體(紅色),外泌體定位于Iba1+小膠質(zhì)細胞(綠色)的細胞質(zhì)。在注射后六周,將視網(wǎng)膜冷凍并切成切片或徑向切割并固定在載玻片上,然后用針對Iba1陽性(紅色)的抗體染色(圖5C),發(fā)現(xiàn)在核層中用M1-EXO處理后,遷移的小膠質(zhì)細胞數(shù)量增加(圖5D),這是活化小膠質(zhì)細胞的典型細胞特征。此外,細胞密度的定量表明,M1-EXO處理顯著增加小膠質(zhì)細胞的極化水平,而其他組之間沒有顯著差異(圖5E-F)。這些發(fā)現(xiàn)表明,來源于M1 BV2細胞的外泌體促進視網(wǎng)膜駐留小膠質(zhì)細胞的活化,這與體外結(jié)果一致。
圖5 M1小膠質(zhì)細胞外泌體促進體內(nèi)視網(wǎng)膜小膠質(zhì)細胞活化
5、M1小膠質(zhì)細胞外泌體在體內(nèi)視網(wǎng)膜小膠質(zhì)細胞活化后誘導(dǎo)血管生成
在成年小鼠模型中M1-EXO玻璃體內(nèi)注射后,免疫熒光分析顯示,在PBS、SHAM或M4-EXO治療后,血管生成的標志物Cxcr4和Sdf1均顯示沿視網(wǎng)膜外緣和脈絡(luò)膜中微弱的非特異性染色。相比之下,Cxcr4和Sdf1在M1-EXO-注射小鼠的切片中強烈陽性(圖6A)。此外,視網(wǎng)膜血管內(nèi)皮細胞增殖是參與病理性新生血管形成的生物學(xué)過程。因此,視網(wǎng)膜組織切片進一步用針對Pecam1和Ki67的抗體進行雙重染色,前者是血管內(nèi)皮細胞的標志物,后者是增殖細胞的標志物。在對每節(jié)向前延伸至內(nèi)限膜的Ki67-和Pecam1-陽性細胞進行計數(shù)后,與其他三組相比,僅在M1-EXO治療組中觀察到內(nèi)皮細胞增殖(圖6B)。與體外結(jié)果一致,M1小膠質(zhì)細胞外泌體促進體內(nèi)視網(wǎng)膜異常內(nèi)皮細胞增殖。
考慮到體內(nèi)視網(wǎng)膜微環(huán)境的復(fù)雜性,為進一步證明M1-EXO可能激活靜息小膠質(zhì)細胞從而增強小膠質(zhì)細胞介導(dǎo)的血管生成的假設(shè),作者使用米諾環(huán)素(一種典型的小膠質(zhì)細胞活化抑制劑)建立干預(yù)組。如圖6C所示,米諾環(huán)素處理顯著減少活化小膠質(zhì)細胞的數(shù)量(圖6D)。此外,米諾環(huán)素顯著抑制Pecam1 +細胞突破M1-EXO誘導(dǎo)的內(nèi)部限制膜(圖6E)。這些結(jié)果表明,米諾環(huán)素通過抑制視網(wǎng)膜小膠質(zhì)細胞的活化來緩解M1-EXO的促血管生成作用,并提供大量證據(jù)表明M1小膠質(zhì)細胞外泌體的促血管生成作用是由活化的視網(wǎng)膜小膠質(zhì)細胞介導(dǎo)的。換句話說,M1-EXO通過激活M0小膠質(zhì)細胞來放大小膠質(zhì)細胞相關(guān)的促血管生成作用。然而,確切的機制仍有待闡明。
圖6 來源于M1小膠質(zhì)細胞的外泌體促進體內(nèi)血管生成,抑制視網(wǎng)膜小膠質(zhì)細胞的活化可逆轉(zhuǎn)這種作用
6、M1小膠質(zhì)細胞外泌體通過外泌體miR-155-5p誘導(dǎo)靜息小膠質(zhì)細胞活化
新出現(xiàn)的證據(jù)表明,外泌體富含miRNA,并進一步遞送miRNA以調(diào)節(jié)受體細胞的功能。為闡明M1-EXO激活小膠質(zhì)細胞的具體機制,作者對來自BV1細胞的外泌體在靜息和M2激活條件下進行miRNA測序。如火山圖(圖7A)所示,發(fā)現(xiàn)與M103-EXO相比,M1-EXO中有103個差異表達的miRNA,包括16個上調(diào)和87個下調(diào)miRNA。使用熱圖進一步可視化已鑒定的miRNA的組內(nèi)和組間差異(圖7B)。此外,通過使用qRT-PCR,作者發(fā)現(xiàn)M1 BV2細胞和M1-EXO中只有miR-155-5p的水平顯著高于各自的對照(圖7C)。然而,miR-146b-5p、miR-181d-3p和miR-5121的變化在細胞和外泌體之間并不一致。因此,miR-155-5p可能在外泌體中起關(guān)鍵作用,并進一步測試。
圖7 來自M1小膠質(zhì)細胞的外泌體miR-155-5p在體外和體內(nèi)誘導(dǎo)靜息小膠質(zhì)細胞活化
為進一步闡明miR-155-5p在BV2細胞來源的外泌體中的確切作用,調(diào)節(jié)miR-155-5p在外泌體中的表達模式,并觀察修飾的外泌體對PMG的作用。首先,作者通過agomir轉(zhuǎn)染在M0-EXO中過表達miR-155-5p,其最初在miR-155-5p表達中較低(ago-miR-155-5p組)。其次通過在最初高表達miR-155-5p的M1-EXO中antagomir轉(zhuǎn)染抑制miR-155-5p(antago-miR-155-5p組)。然后分別鑒定用改良EXO處理的PMG的M1活化曲線。利用三種M1表型標志物(iNOS、IL1β、CD86)來鑒定M1活化譜。數(shù)據(jù)顯示,miR-155-5p在M0-EXO中的過表達顯著引起顯著的形態(tài)學(xué)變化(圖7F-G)和促進靜息PMG的M1極化(圖7D-E、圖7H-I)。值得注意的是,當(dāng)miR-155-5p在M1-EXO中被antagomiR-155-5p下調(diào)時,M1-EXO促進M1極化的能力被顯著抑制,這反映在減少的形態(tài)學(xué)異常(圖7F-G)和活化標志物(圖7D-E)。
接下來,為確認miR-155-5p在體內(nèi)的生物活性,將轉(zhuǎn)染有agomiR或antiagomiR的外泌體注射到玻璃體室中。視網(wǎng)膜平片的結(jié)果表明,外源性miR-155-5p補充有助于M0-EXO誘導(dǎo)PMG活化,并且M1-EXO的miR-155-5p下調(diào)減輕小膠質(zhì)細胞活化(圖7J-K)。因此,外泌體miR-155-5p可以調(diào)節(jié)小膠質(zhì)細胞的極化狀態(tài),可能是外泌體介導(dǎo)的小膠質(zhì)細胞活化的關(guān)鍵分子。
7、外泌體miR-155-5p通過調(diào)節(jié)Socs1/NFκB途徑參與小膠質(zhì)細胞活化
為探究miR-155-5p激活和炎癥轉(zhuǎn)換靜息小膠質(zhì)細胞的機制,作者利用生物信息學(xué)分析預(yù)測miR-155-5p的潛在靶基因。利用五個數(shù)據(jù)庫(miRanda,miRDB,PITA,TargetScan和PicTar)獲得32個交叉的mRNA(圖8A)。對重疊的候選mRNA進行進一步的功能富集分析,以確定與炎癥相關(guān)的途徑?;谝幌盗猩镄畔W(xué)分析,Socs1被認為是miR-155-5p的關(guān)鍵靶標,因為它介導(dǎo)免疫和炎癥信號傳導(dǎo)。因此,為確認生物信息學(xué)分析的結(jié)果,作者構(gòu)建含有Socs3 mRNA的1'-UTR的雙熒光素酶報告質(zhì)粒系統(tǒng)。熒光素酶報告質(zhì)粒和miR-155-5p模擬物或加擾模擬物共轉(zhuǎn)染到PMG中。熒光素酶活性分析表明,miR-155-5p直接與Socs1 3'-UTR相互作用并降低Socs1的表達(圖8B);因此,Socs1的調(diào)節(jié)可能是破譯外泌體miR-155-5p與視網(wǎng)膜炎癥之間機制的關(guān)鍵。
先前的研究表明,Socs1通過與NFκB亞基p65相互作用來限制NFκB信號傳導(dǎo)和核NFκB活性,而NFκB轉(zhuǎn)錄因子家族的激活是調(diào)節(jié)小膠質(zhì)細胞活化和促炎分子表達的關(guān)鍵步驟。因此,Socs1可能通過調(diào)節(jié)NFκB參與M1-EXO介導(dǎo)的細胞活化,這已被蛋白質(zhì)印跡測定證實。如圖8C-D所示,M1-EXO顯著抑制Socs1的表達,其次是磷酸化NFκB和兩個促炎標志物(iNOS,Il1β)的上調(diào)。
為進一步證明M1-EXO的促炎作用是由Socs1和下游轉(zhuǎn)錄因子NFκB介導(dǎo),作者進行功能喪失實驗(圖8E)。如圖8F所示,antagomiR-155-5p轉(zhuǎn)染的M1-EXO顯著促進Socs1的表達,并下調(diào)PMG中磷酸化NFκB的表達。與空載體轉(zhuǎn)染相比,通過siRNA轉(zhuǎn)染敲低Socs1到PMGs也顯著減輕antagomiR-155-5p的抑制作用(圖8F-G)。因此,Socs1的敲低可以模擬外泌體miR-155-5p的類似促炎作用。這些結(jié)果表明,miR-155-5p的靶標Socs1在小膠質(zhì)細胞活化和視網(wǎng)膜炎癥中起著至關(guān)重要的作用。
圖8 外泌體miR-155-5p通過靶向Socs1調(diào)節(jié)NFκB通路促進小膠質(zhì)細胞活化
8、轉(zhuǎn)錄因子Irf1促進小膠質(zhì)細胞中的細胞和外泌體miR-155-5p
基于上述結(jié)果,作者證實M155激活的小膠質(zhì)細胞中細胞miR-155-5p水平升高,從而導(dǎo)致外泌體中miRNA水平升高,最終在小膠質(zhì)細胞中傳播激活信號和炎癥反應(yīng)。然而,miR-155-5p在活化的小膠質(zhì)細胞中究竟如何增加仍然難以捉摸。越來越多的證據(jù)表明,轉(zhuǎn)錄因子(TFs)可以直接或間接觸發(fā)miRNA的表達。為確定負責(zé)miR-155-5p上調(diào)的潛在TF,在靜息BV2細胞和活化的BV2細胞之間進行mRNA測序以篩選差異表達的基因(圖9A)。此外,JASPAR數(shù)據(jù)庫預(yù)測的差異表達基因和潛在轉(zhuǎn)錄因子的交叉分析表明,三個候選基因可能負責(zé)miR-155-5p的表達(圖9B)。在這些候選細胞的GSEA之后,作者發(fā)現(xiàn)與靜息細胞相比,轉(zhuǎn)錄因子Irf1相關(guān)途徑在活化的小膠質(zhì)細胞中大大富集(圖9C)。此外,與靜息BV1小膠質(zhì)細胞相比,活化的BV2小膠質(zhì)細胞中Irf1的蛋白表達顯著增加(圖9D)。
已知miR-155-5p是從miR155宿主基因(miR155HG)加工而來的。為證實轉(zhuǎn)錄因子Irf1與miR155HG的啟動子結(jié)合并隨后促進miR-155-5p的表達(圖9E),構(gòu)建miR155HG啟動子-熒光素酶報告質(zhì)粒系統(tǒng),并將其與Irf1過表達質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染到BV2細胞中。轉(zhuǎn)染后檢測到熒光素酶活性。圖9F顯示Irf1可以激活miR155HG的啟動子。此外,Irf1的過表達顯著促進miR155HG和miR-155-5p在BV2小膠質(zhì)細胞中的表達(圖9G)。所有這些結(jié)果表明,上調(diào)的Irf1直接結(jié)合miR155HG的特異性DNA序列,并促進miR-155-5p在活化小膠質(zhì)細胞中的表達。
圖9 轉(zhuǎn)錄因子Irf1促進M1激活的小膠質(zhì)細胞中miR-155-5p的表達
這是第一項揭示M1小膠質(zhì)細胞外泌體介導(dǎo)的靜息小膠質(zhì)細胞活化和遷移,炎癥級聯(lián)反應(yīng)和視網(wǎng)膜血管生成的新機制的研究。具體機制包括:(1)上調(diào)的Irf1直接結(jié)合miR155HG的特異性DNA序列,促進miR-155-5p在活化小膠質(zhì)細胞中的表達。(2)來自M155活化小膠質(zhì)細胞的外泌體miR-155-5p通過靜息小膠質(zhì)細胞內(nèi)吞。(3)外泌體miR-155-5p通過選擇性抑制Socs1激活NFκB途徑和小膠質(zhì)細胞激活狀態(tài)。(4)增加和聚集的M1小膠質(zhì)細胞引起炎癥級聯(lián)反應(yīng),(5)放大促血管生成作用,最終誘導(dǎo)視網(wǎng)膜異常內(nèi)皮細胞增殖。
圖10 說明M1小膠質(zhì)細胞中Irf1介導(dǎo)的外泌體miR-155-5p調(diào)節(jié)Socs1表達,以促進靜息小膠質(zhì)細胞的活化并放大促血管生成作用的示意圖
實驗方法
單細胞測序、細胞培養(yǎng)、外泌體分離、WB、流式細胞術(shù)、CCK8細胞活力測定、傷口愈合實驗、血管形成測定、ELISA、免疫熒光、qRT-PCR、過表達與敲除、轉(zhuǎn)染、miRNA靶標預(yù)測、熒光素酶報告基因檢測、miRNA-Seq、mRNA-Seq。
參考文獻
Chen X, Wang X, Cui Z, et al. M1 Microglia-derived Exosomes Promote Activation of Resting Microglia and Amplifies Proangiogenic Effects through Irf1/miR-155-5p/Socs1 Axis in the Retina. Int J Biol Sci. 2023;19(6):1791-1812. Published 2023 Mar 21. doi:10.7150/ijbs.79784